Какая кровь у черепах

Методики взятия крови у черепах

Стребкова В.Н.,
ветеринарная клиника “Центр” г. Москва

XIII ВСЕРОССИЙСКИЙ ВЕТЕРИНАРНЫЙ КОНГРЕСС

Возможность сохранения и эффективного взятия проб крови рептилий жизненно важный аспект герпетологической медицины. Кровь у сухопутных и водных черепах можно взять из яремной вены, плечевых и бедренных вен, вентральной и дорзальной копчиковых вен, затылочного венозного синуса и сердца. Выбор метода в каждом конкретном случае часто зависит от вида черепахи (размера, биологических особенностей и т.п.). Объем пробы варьирует в зависимости от количества клинических исследований, но максимальный объем однократного забора крови составляет 0,6% от массы тела (6 мл на кг). Менее гуманные методы, такие как отсечение когтей, во-первых, не этичны, а во-вторых, пригодны не для всех видов исследований. Например, для биохимического исследования такая кровь не годится, поскольку может быть загрязнена.

Часто при взятии крови могут иметь место сопутствующие факторы, затрудняющие процедуру. Например, венепункция копчиковых вен часто осложняется попаданием иглы в рядом проходящие лимфатические протоки и контаминацией крови лимфатической жидкостью. При взятии крови из яремной вены необходимо полностью выпрямить шею черепахи, что может быть затруднительно у некоторых видов черепах, способных к замыканию панциря, например, коробчатых. Проба крови из периферических вен может быть очень небольшого объема.

Разнообразие черепах мешает использовать во всех случаях один какой-то метод. Поэтому знание различных методик взятия крови поможет клиницисту выбрать наилучший метод исходя из морфологии данного конкретного вида.

АНАТОМИЯ

1. Затылочный венозный синус – расположен непосредственно позади затылочного гребня, вдоль средней линии.
2. Плечевая вена проходит параллельно вентральному или дорзальному сухожилию трицепса.
3. Вентральная каудальная вена проходит вдоль средней линии хвоста с вентральной стороны
4. Дорзальная вена позвоночника проходит вдоль средней линии по дорзальной стороне хвоста.
5. Яремная вена расположена в латеральной или дорзо-латеральной области шеи, каудальнее тимпанической мембраны.
6. Бедренная вена проходит непосредственно вдоль вентральной средней линии проксимальной части бедра.
7. Кардиоцентез – желудочек сердца обычно находится между вентральной средней линией и каудальным краем грудных щитков пластрона.

ОБОРУДОВАНИЕ

В зависимости от размера черепахи применяют иглы 22-27 G 18-50 мм. Размер шприца также варьирует, но обычно используются шприцы 1-10 мл. Мягкие катетеры-бабочки тоже могут быть использованы даже для не полностью зафиксированных животных. Пробирка с антикоагулянтом предотвращает свертывание крови при длительной аспирации для получения достаточного объема пробы.

ТЕХНИКА

1. Пункция затылочного венозного синуса. Тело животного должно быть хорошо зафиксировано ассистентом или при помощи механических приспособлений, обычно в грудном положении. Шею необходимо полностью вытянуть. Обычно вытягивают голову черепахи и немного перегибают через край стола, чтобы обнажить затылочную часть. Можно использовать наркоз, как вспомогательное средство, так как надежная фиксация в этом случае абсолютно необходима. Далее пальпируется затылочный гребень и игла вводится под углом 30°.

2. Пункция плечевой вены. Пациента необходимо расположить в грудном положении и вытянуть переднюю ногу как можно дальше для доступа к локтевому сгибу. Для крупных черепах, которые не позволяют максимально вытянуть конечность без общей анестезии, достаточно легкой анестезирующей дозы. В качестве альтернативы можно также использовать подставку под черепаху. Обычно черепахи, находясь на весу, вытягивают все четыре конечности открывая доступ к плечевым венам. Плечевая вена локализуется дорзально или вентрально по отношению к связке трицепса, которая может быть видна на сгибе.

3. Пункция вентральной хвостовой вены. Животное находится в положении на спине или может удерживаться вертикально, чтобы кровь прилила к хвосту. Игла вводится дистально по отношению к клоаке. Игла упирается в копчиковый позвонок с вентральной стороны и можно осторожно начинать искать вену, поводя иглой чуть в сторону. Вена обычно расположена непосредственно вентральнее позвонка.

4. Пункция дорзальной хвостовой вены. Животное в положение на груди, угол введения иглы 30º. Дорзальная средняя линия чаще всего самое точное место для венепункции у сухопутных черепах, но у водных более подходящим может оказаться небольшое боковое смещение от нее. Иглу вводят до упора в позвонок, над которым и проходит вена, и путем аспирации находят сосуд.

5. Пункция яремной вены. Расположение яремной вены немного отличается от такового у млекопитающих. В отличие от большинства млекопитающих, яремная вена обычно не располагается в вентральном венозном желобе. У черепах она обычно проходит по латеральной стороне шеи несколько дорзальнее средней линии. Она может быть видна у сытых не обезвоженных животных со светлой кожей. Для визуализации вены следует пережать ее более проксимально и отвернуть голову черепахи. Надежная фиксация животного абсолютно необходима при использовании этого метода для большинства видов, чтобы можно было полностью вытянуть шею и изогнуть ее. Пробы крови из яремной вены могут быть значительно контаминированы лимфой.

6. Пункция бедренных вен. Животное в положении на спине. Необходимо выпрямить тазовую конечность, это открывает доступ у большинства видов к основанию бедра с медиальной стороны. Бедро пальпируется с вентро-медиальной стороны конечности и вена располагается почти прямо над костью рядом с пластроном. Ее обычно не видно и часто бывает трудно обнаружить у большинства видов.

7. Кардиоцентез – используют для взятия крови у мелких животных. Поскольку эта процедура является наиболее инвазивной, не следует применять эту методику в обычной практике. Чаще всего ее используют для эвтаназии сильно травмированных и обезвоженных животных. Изредка ее можно использовать для видов, у которых другие доступы могут быть ограничены, например, для коробчатых черепах (Terrapene carolina), у которых панцирь представляет собой полностью замыкающуюся конструкцию.

Расположение сердца может изменяться в зависимости от напряжения и смещения шеи, так что фиксация головы также желательна. Пластрон пунктируется иглой 18-20 G прямо над сердцем. Быстрое введение с небольшим усилием обычно достаточно для проникновения в желудочек сердца.
Перед этим необходимо провести предварительную оценку положения сердца — оно расположено в точке пересечения вентральной средней линии с каудальным краем грудных щитков пластрона.

Список литературы
1. Lloyd M., Chelonian Venipuncture Techniques, Bulletin of the Association of Reptilian and Amphibian Veterinarians, Vol. 9, № 1, 1999;
1. Martinez-Silvestre A., Venipuncture Technique of the Occipital Venous Sinus in Freshwater Aquatic Turtles, Journal of Herpetological Medicine and Surgery, Vol.12, No.4, 2002;
2. Hernandez-Divers Sonia M., Hernandez-Divers Stephen J., Angiographic, Anatomic and Clinical Technique Descriptions of A Subcarapacial Venipuncture Site for Chelonians, Journal of Herpetological Medicine and Surgery, Vol.12, No.2, 2002

Какая кровь у черепах

+7(495) 510-86-04 +7(499) 168-85-86
г. Москва, Открытое шоссе, дом 5, корпус 6

+7(495) 972-74-06 +7(499) 261-70-83
г. Москва, ул. Нижняя Красносельская, дом 28

VetLek / Статьи / Некоторые методы диагностики внутренних болезней черепах

Рекомендуем:

Подпишись на новости
ветаптеки VETLEK!

Автор: Васильев Д. М., Московский зоопарк, отдел герпетологии.

Опубликовано: 11 февраля 2015

Раздел ветеринарной медицины, изучающий болезни рептилий и амфибий, который можно было бы назвать ветеринарной герпетологией стал бурно развиваться с конца 70-х годов. Это явилось следствием развития террариумистики, под влиянием моды на террариумных животных и переориентации международного зооторгового рынка на низших позвоночных, прежде всего, из-за ужесточения норм ввоза для птиц и млекопитающих. Результатом стала целая серия публикаций по этому вопросу, включая фундаментальные книги монографического плана.

Однако, большинство относительно доступной у нас западной литературы в основном ориентирована на пользователя, т.е. любителя-террариумиста или, в крайнем случае, на специалиста-герпетолога, а не на ветеринарного врача. Все такие книги имеют один существенный недостаток: в них болезнь обычно скрывается по внешним симптомам и приводится терапевтическая схема, а методы диагностики, особенно сложные, игнорируются.

В результате врач, использующий литературу подобного рода в качестве пособия, ставит диагноз только по аналогии, не прибегая к дифференциальной диагностике. Это, судя по нашему опыту, часто приводит к существенным врачебным ошибкам.

Данное сообщение касается болезней черепах. Во-первых, эта группа наиболее распространена в неволе, и во-вторых, в практике с этими животными традиционные методы исследований наиболее затруднены из-за особенностей физиологии черепах и наличия панциря. Несмотря на то, что для диагностики внутренних болезней черепах применялись самые разные методы исследований, включая компьютерную томографию, УЗИ, метод магнитного резонанса, эндоскопию, ЭКГ, изотопный анализ и некоторые другие, мы остановимся только на тех, которые можно применять в рутинной клинической практике.

При оценке общего состояния черепах особенно важно определить массу тела и ее соответствие нормам. Для некоторых видов были предложены так называемые «кривые Джексона», показывающие нормальные соотношение массы черепахи и длины ее панциря. Однако, для видов обычных на нашем зооторговом рынке эта формула — 0,15 L3 не подходит. В принципе, здоровая черепаха весит столько же, сколько вода аналогичного объема и должна тонуть при выдохе. При определенном навыке существенное отклонение массы можно определить просто при взвешивании черепахи на руке. Для взрослых среднеазиатских черепах более приемлема полученная нами формула 0,3 L3. Этой формулой следует пользоваться для определения избыточного веса, что обычно связано с развитием целомического отека или скоплением мочи в мочевом пузыре.

Пальпацией определяют размягчение панциря, травмы, опухоли и т.д. Бимануально в области паховых ямок можно определить уролиты или колебания сформированных яиц у беременных самок. Ценный материал может дать внутренняя пальпация, осуществимая у черепах с размером панциря более 15 см. Этим способом можно определить гипертрофию почек, уролиты, беременность, копростаз, новообразования в клоаке. Этим же способом у крупных черепах получают мочу. Аускультацию легких проводят через влажную ткань и также у достаточно крупных особей. При этом, когда черепаха втягивает голову, трахея принимает S-образную форму и прилегает своим основанием вплотную к нижнему панцирю. Поэтому при аускультации нижнего панциря обычно слышны только шумы в гортани. При аускультации карапакса можно услышать, сравнивая поля обоих легких, истинные легочные хрипы или крепитацию при пневмонии II стадии. При «влажной» пневмонии влажные разнокалиберные хрипы обычно слышны не из легких, а из дистального отдела трахеи. В этом случае не будет ощущаться разницы между шумами со стороны каждого легкого.

Мочу у черепах можно получить катетером, который вводят в клоаку наиболее вентрально, либо при пункции мочевого пузыря. Моча всасывается в мочевой пузырь из клоаки через его шейку и может сохраняться долгое время (месяцы), поэтому исследовать мочу следует в динамике, так как изменения могут иметь экстраренальный характер. Полученную мочу следует перемешать и раздавленную каплю исследовать в поляризованном свете для определения нетипичных кристаллов (оксалатов, уратов аммония и фосфатов). Этим же методом исследования определяют подвижных трофозоидов Hexamita parva, балантидиев и яйца трематод и капиллярий. Часть мочи следует отцентрифугировать, взять пипеткой клеточный осадок, сделать тонкий мазок и окрасить его по Гимзе после фиксации метанолом для цитологических исследований. Остальную мочу можно исследовать экспресс-методом. На наш взгляд, наиболее существенны изменения следующих параметров: белок — стойкое повышение более 100 мг/дл обычно указывает на подагру или патологию со стороны почек; рН — в норме кислая, 5,5-6. Сдвиг в щелочную сторону обычно характеризует застой в мочевом пузыре, но может свидетельствовать и о подагре или почечной недостаточности; плотность — в норме высокая, 1025-1030. Снижение плотности может указывать на формирование уролита или задержку твердой фракции мочи. Стойкое снижение до 1005-1010 при параллельной остеомаляции и геморрагии указывает на почечную недостаточность. глюкоза — в норме отсутствует.

Так как у черепах до настоящего времени не выявляли истинного сахарного диабета, глюкозурию следует считать алиментарной, что обычно имеет место при кормлении молоком и сладкими фруктами. В редких случаях это является следствием некротического энтероколита. биливердин — основной желчный пигмент у рептилий и птиц, обуславливающий желто-зеленую окраску твердой фракции мочи. Биливердинурия обычно указывает на патологию со стороны печени или инфекцию урогениталыюй сферы.

Исследование крови обычно проводят у черепах достаточного размера, так как необходимое количество крови (1% от массы тела) можно получить только у крупных особей. Взятие крови осуществляют методом пункции яремной, плечевой вены и вены лопатки; пункции орбитального, постокципитального и копчикового синусов, кардиоцентеза и отсечения кончика хвоста или когтя. Кроме пункции яремной вены, которую можно осуществить под визуальным контролем, и кардиоцентеза все остальные методы могут вызвать загрязнение крови лимфой или тканевой жидкостью. В таком анализе могут значительно изменяться некоторые биохимические показатели. Так, плазменный калий и фосфор увеличиваются в 2 раза, уровень КФК может возрастать более, чем в 10 раз, кальций падает в 1,5 раза и глюкоза — в 2 раза. При разбавлении крови лимфой резко падает общий белок, гематокрит и количество эритроцитов. При загрязнении тканевой жидкостью повышается количество лейкоцитов, возрастает уровень ACT и мочевой кислоты. После правильного взятия крови (лучше без применения антикоагулянтов) приготавливают тонкий мазок, окрашенный сначала по Май-Грюнвальду, а затем по Гимзе (в зарубежной практике — по Райту) и исследуют под иммерсией. Так как все форменные элементы крови черепах имеют ядра, при их дифференциации (особенно лимфоцитов, тромбоцитов и азурофильных моноцитов) возникают определенные сложности.

Для проведения цитологических исследований нужен определенный опыт. Особенные трудности возникают при подсчете общего количества лейкоцитов, так как общепринятые методы (с уксусной кислотой и метиленовой синью) не разрушают эритроциты и тромбоциты, что делает подсчет лейкоцитов невозможным. Наиболее удобным, хотя и трудоемким, является прямой метод Натта и Гаррика (1958) и непрямой метод с флоксином В. При использовании последнего — эозинофилы и азурофилы окрашиваются в красный цвет. После подсчета их абсолютного количества определяют общее количество лейкоцитов при условии, что процент этих клеток в L-формуле уже определен. Следует отметить, что нормальные показатели количества эритроцитов и L-формула у черепах подвержены значительным сезонным флуктуациям, поэтому кровь следует исследовать в динамике. Остальную часть крови сразу же помещают в центрифужную пробирку с антикоагулянтом (лучше использовать литиевый гепарин, так как цитрат и ЭДТА у рептилий вызывают гемолиз). Часть крови отбирают для определения PCV микрогематокритовым методом, а оставшуюся часть центрифугируют и отделяют плазму для биохимического исследования и определения: электролитов. Если посылать в лабораторию цельную гепаринизированную кровь, то в связи с активным метаболизмом эритроцитов и частичным гемолизом в анализе существенно изменяются несколько параметров.

Исследование крови черепах

Взятие крови для исследований у черепах существенно сложнее, чем у млекопитающих. Пережать вены невозможно. Кроме того, вен не видно, и они не пальпируются. В последние годы разработаны новые методы забора крови, которые, правда, требуют терпения и навыка. Так как кровь черепах очень быстро свертывается, пункционная канюля и соответствующий шприц должны быть гепаринизированы.

Возможности взятия крови

1. После сильного укорачивания когтей получают несколько капель крови, которых достаточно для некоторых исследований. Кровотечение останавливают несколькими каплями Lotagen или термокаутером.
2. Из Vena coccygealis superior, которая проходит дорсовентрально к основанию хвоста. Кровь взять проще у самцов, так как у них хвост длиннее, чем у самок. После тщательной дезинфекции кожу прокалывают посередине хвоста иглой диаметром до 1,8 мм под углом 45° и далее вводят до кости. Вблизи этой кости находится сосуд. При некотором терпении и с помощью осторожных движений иглы удается взять кровь.
3. Пункция Vena ulnaris плечевого сплетения является еще более тонкой работой. Для этого черепаха фиксируется на краю стола таким образом, чтобы передняя лапа, из которой производят забор крови, свободно свисала. В месте сгиба запястного сустава нащупывают под кожей сухожилие. После тщательной дезинфекции делают укол между костными элементами сустава и сухожилием под углом 45°. Острие иглы ориентировано в направлении противоположной задней конечности. После осторожного манипулирования, как правило, получают кровь. Иногда острием иглы задевают проходящий рядом с веной лимфатический сосуд. В этом случае взятие крови на этой конечности необходимо сразу же прекратить и продолжить процедуру на другой конечности. Лимфа в крови привела бы к получению неправильных результатов анализа.
4. При пункции яремной вены черепаху хорошо фиксируют на столе. В этом случае голову черепахи вытягивают и после тщательной дезинфекции делают укол за ухом в верхний край барабанной перепонки под углом 45° краниально в направлении панциря, пока из канюли не появится крот. Как обычно, необходимо соблюдать осторожность. Остановка крови возможна путем прижатия.
5. Взятие крови возможно также путем пункции сердца. Хотя авторы не пользовались этим методом, мы описываем здесь различные методы, так как они могут быть использованы, на худой конец, для умерщвления черепах. Многие авторы рекомендуют после соответствующей очистки и дезинфекции пластрона просверлить дырочку посередине между нагрудным и брюшным щитками и произвести пункцию сердца. Другая возможность пункции сердца: после тщательной дезинфекции вводят длинную иглу в лапу находящейся на спине черепахи через кожу и ведут иглу в направлении сердца. В более чем 200 случаях удавалось взять кровь таким образом.
6. Пункция бедренного сплетения применяется для маленьких черепах. Для этого делают укол на внутренней поверхности бедра каудолатерально в направлении головки бедренной кости.

Какого цвета кровь у черепах?

Ответ оставил Гуру

У черепах кровь красного цвета.

Ответ оставил Ser012005

Кровь у них красного цвета, как и у человека.

Если тебя не устраивает ответ или его нет, то попробуй воспользоваться поиском на сайте и найти похожие ответы по предмету Биология.

• Первая
• «
• 1
• 2
• 3
• »
• Последняя

А. Выберите один правильный ответ
1. Главный признак живого организма:
а) изменение формы,
б) изменение размера,
в) обмен веществ,
г) пассивное передвижение

А 2. Все живые организмы в отличие от неживых:
а) размножаются, растут, развиваются,
б) существуют независимо от среды,
в) изменяют форму,
г) изменяются под воздействием среды.

А 3. В предложенном перечне найди название систематической категории:
а) вид,
б) собака,
в) роза,
г) человек.

А 4. Группа особей, скрещивающихся между собой и дающих плодовитое потомство – это:
а) вид,
б) род,
в) тип,
г) отряд

А 5. Главная задача систематики – это изучение:
а) этапов эволюции,
б) отношений организмов и окружающей среды,
в) приспособленности организмов к условиям обитания,
г) рганизмов и объединение их в группы на основе родства.

Вариант 2
Б 1. Вирусы обладают такими признаками живого, как
1) питание
2) рост
3) обмен веществ
4) наследственность.

Б 2. Преемственность поколений обеспечивается за счет
1) развития
2) роста
3) размножения
4) обмена веществ.

Б 3. Удвоение ДНК происходит на уровне организации жизни
1) клеточном
2) молекулярном
3)органо-тканевом
4) организменном

Б 4. Круговорот воды в природе наблюдается на уровне организации жизни
1) популяционно-видовом
2) биосферном
3) экосистемном
4) организменном.

Б 5. Цветение черемухи обыкновенной наблюдается на уровне организации жизни
1) клеточном
2) молекулярном
3)органо-тканевом
4) организменном

Б 6. Деление ядра – это пример проявления жизни на уровне
1) клеточном
2) молекулярном
3)органо-тканевом
4) организменном..

Б 7. Динамика численности уссурийского тигра – это пример на уровне
1) популяционно-видовом
2) биосферном
3) экосистемном
4) организменном.

Б 8. На каком уровне организации живого происходят генные мутации?
1) организменном
2) клеточном
3) видовом
4) молекулярном

Б 9. Способность организма отвечать на воздействия окружающей среды называют:
1) воспроизведением
2) эволюцией
3) раздражимостью
4) нормой реакции

Б 10. Живое от неживого отличается способностью
1) изменять свойства объекта под воздействием среды
2) участвовать в круговороте веществ
3) воспроизводить себе подобных
4) изменять размеры объекта под воздействием среды

Б 11. Клеточное строение — важный признак живого — характерен для
1) бактериофагов
2) вирусов
3) кристаллов
4) бактерий.

Б 12. Для изучения строения клетки необходимо:
1) рассмотреть под микроскопом орган растения, например, лист;
2) приготовить тонкий срез какого либо растения и рассмотреть его под микроскопом;
3) выделить из органа одну клетку и рассмотреть ее под микроскопом;
4) поставить опыт по изучению значения света в жизни растения и наблюдать за ним

У черепахи из под панциря идет кровь

Нередко черепахам требуется ветеринарная помощь по причине нарушения целостности панциря. Случайно наступить ногой или придавить ножкой стула «гуляющую» по полу сухопутную черепаху очень легко. Образуются трещины на верхней или нижней части панциря, а также на перемычке. Часто повреждение сопровождается травмированием кожи. Панцирь красноухих черепах может треснуть чаще всего при падении, и такие травмы обычно сопровождаются кровотечением.

Повреждение панциря – серьезная проблема, требующая оказания экстренной помощи: санации ран, репозиции и фиксации отломков, назначения последующего лечения.

Краткая анатомия панциря черепахи:

Панцирь необходим для защиты внутренних органов и частей тела. Он состоит из выгнутого верхнего щита (карапакса) и ровного нижнего (пластрона). Карапакс и пластрон состоят из отдельных костных пластин. Карапакс включает спинные ребра и остистые отростки позвонков. Пластрон образован брюшными ребрами и ключицами. Между собой карапакс и пластрон соединяются костной перемычкой или сухожильной связкой. Сверху костные пластины несимметрично закрыты роговыми щитками, являющимися производными кожи. Каждый роговой щиток постоянно растет.

Наиболее частые причины получения черепахами травм панциря:

• «упала из рук на пол»;
• «наступили ногой»;
• «придавили ножкой стула/стола/ холодильника/ и т.д.»;
• «выпала из акватеррариума»;
• «укусила собака»;
• «наехали колесом машины/велосипеда/коляски/трактора».

Подобных травм можно избежать, если соблюдать базовые правила содержания черепах (держать в террариуме, загоне, хотя бы картонной коробке, но никак не на свободном выгуле по полу).

Многолетнее неполноценное кормление (однообразный рацион, не содержащий витамин Д и кальций, пища животного происхождения, отсутствие микроэлементных добавок и т.д.) и содержание (жизнь на полу, регулярная «спячка под батареей», отсутствие купания в теплой воде) приводят к нарушению обмена веществ, длительному скрытому развитию метаболической болезни, алиментарного гиперпаратиреоидизма и хронической почечной недостаточности. Эти заболевания черепах сопровождаются уменьшением твердости и эластичности панциря и способствует получению более тяжелой травмы.

Что следует сделать при обнаружении нарушения целостности панциря.

Самостоятельно, в случае, если раны не загрязнены и не имеется выпячивания органов, можно зафиксировать панцирь самоклеящимся эластичным бинтом или плотным тканевым пластырем (из обычной медицинской аптеки), сделав несколько тугих туров по кругу, одновременно проводя совмещение трещин пальцами.

НЕЛЬЗЯ закрывать раны марлевым бинтом или иным впитывающим материалом. Это только ускорит потерю влаги из полости тела и развитие обезвоживания. Кроме того, под такой повязкой гораздо комфортнее будут себя чувствовать попавшие в рану споры грибков и бактерии.

Следующий, правильный вариант действий: найти контакты ветеринарного врача-герпетолога и срочно обратиться к нему на прием.

Травма, приводящая к взаимодействию полости тела с внешней средой, для черепах не так опасна, как для млекопитающих. Причина этому, отсутствие диафрагмы, разделяющей тело на грудную и брюшную полости, и отсутствие в плевральной полости отрицательного давления. Из-за этой особенности у черепах не происходит ателектаза (склеивания) легких и животное продолжает жизнь дальше.

Но это не значит, что с оказанием помощи можно затягивать. Открытая полость тела создает условия для быстрого развития обезвоживания, т.е. через рану постоянно происходит испарение внутренних жидкостей организма, что может убить черепаху за время от нескольких часов до нескольких суток (зависит от условий внешней среды и площади испарения).

Также через рану в целомическую полость проникает инфекция – бактерии и грибки из внешней среды. Поселившись на серозных оболочках, эти микроорганизмы быстро размножаются и часто вызывают смерть рептилии от сепсиса. В летний период также высока вероятность заселения в рану личинок мух.

Ветеринарный врач при осмотре оценит общее состояние рептилии и ее жизнеспособность.

Т.к. перелом панциря может сопровождаться и иными травмами (например, полостное кровотечение) не совместимыми с жизнью, при которых оказание помощи бессмысленно. Кроме того, сопровождающие травму панциря иные повреждения могут потребовать проведения длительной стационарной терапии. Нарушение подвижности конечностей (при травме позвоночного столба и спинномозгового канала) или сильный ушиб могут спровоцировать нарушение работы кишечника и мочевого пузыря (из-за болевого синдрома кишка и пузырь не смогут опорожняться). В этом случае потребуется удалять мочу катетером, а для борьбы с запором в желудок зондом будет вводиться вазелиновое масло. Потребуется рентгеновский снимок для оценки целостности костей. Если под пластинами панциря или кожей будут обнаружены гематомы – потребуется провести их санацию.

Мелкие же травмы (трещины без сильного расхождения краев, укусы собак) достаточно будет просто очистить от загрязнений, промыть раствором антисептика и (при необходимости) закрыть изолирующим материалом.

При наличии большой площади расхождения краев и выпадения внутренних органов требуется более серьезная процедура, фактически являющаяся хирургической манипуляцией. Потребуется сопоставить отломки, закрепить их, стараясь не ущемить органы (чаще всего в ране ущемляется дорсальная мембрана одного из легких, также часть самой легочной ткани и внутреннего жира). Рану промыть раствором одного из антисептиков (диоксидина, мирамистима, хлоргексидина, фурацилина), а затем сопоставленные края раны закрепить фиксирующими материалами (обычно полимерами, реже – гипсом) и специальной сеткой, образующей каркас для полимера. Небольшие отверстия могут оставаться в области контакта панциря с кожей. В течение 1-2 недель они закрываются защитным белком фибрином (после чего черепаху при купании можно погружать в воду полностью). Сетка с полимером удерживает края панциря черепахи долгое время, пока происходит сращение сломанных костных структур панциря.

В случаях, когда ткани внутренних органов длительно ущемляются, они некротизируются, что приводит к их дальнейшей ампутации. В ряде случаев необходимо зашивать плевроперитонеум (если он порван при травмировании).

Для водных черепах все несколько сложнее, так как слишком долго (более 2 суток) без воды для них находиться нежелательно. Если удается полностью закрыть рану полимером, то можно почти сразу выпускать черепаху в воду. Если это невозможно из-за характера травмы, рану обрабатывают антисептическим спреем и в течение 5дней все же не выпускают черепаху в воду. За это время рана зарастет фибрином, после чего черепаху днем сажают в воду, а на ночь — в сухой отсадник, где и проводят обработку ран.
Таким образом, в зависимости от характера травмы и определяется порядок действий в каждой конкретной ситуации.

После проведения реконструкции панциря, назначаются терапевтические процедуры и реабилитационное лечение, которые могут включать:

1. инъекцию поливитаминного комплекса (обычно, элеовит);
2. курс антибиотика (чаще всего, байтрил или цефтазидим);
3. жидкостная поддержка – «коктейли» из разнообразных растворов (глюкоза, рингер-локка, аскорбиновая кислота, физиологический раствор, раствор Хартмана и т.д.), вводимые подкожно или внутривенно;
4. препараты кальция (кальция борглюконат или глюконат);
5. гормоны (дексаметазон, дексафорт);
6. средства регенерации тканей и органов (солкосерил, актовегин);
7. средства, ускоряющие восстановление нервной проводимости (нейрорубин, мильгамма, комбилипен);

Важный момент – все лекарственные препараты назначаются именно и только в инъекциях!

• целесообразность купания черепахи определяется характером и расположением травмы на теле рептилии. Т.к. нельзя, чтобы при купании вода попадала в полость тела через негерметичные трещины и микротрещины. Полезно купать черепаху часто. Это ускоряет обмен веществ и регенерацию;
• наружные обработки ран кожи и мелких трещин на панцире (олазоль спрей, алюмоспрей, террамицин спрей).

Таким образом, нарушение целостности панциря часто представляет собой не только нарушение целостности скелета как такового, а выливается в полиорганную травму, при которой могут затрагиваться кожа, мышцы, кости, легкие, внутренний жир, спинной мозг.
Тем не менее, правильно оказанная первая помощь и своевременное обращение к ветеринарному врачу герпетологу оставляет хорошие шансы на сохранение жизни черепахе даже при таком серьезном повреждении.

Другие интересные статьи

Красноухие черепахи – очень яркие и стильные домашние питомцы. Многие владельцы приобретают необычных экзотических животных…

Образ черепахи у нас с детства ассоциируется с двумя симпатичнейшими представительницами этого вида рептилий –…

Владельцы сухопутных черепах довольно часто сталкиваются с проблемами опухших лап и суставов. Чаще всего страдают…

Лечение черепах

Лечение черепах и рептилий. Диагностика

В последние годы в нашей стране неуклонно растет число людей, содержащих рептилий. На зооторговый рынок поступает огромное количество различных видов ящериц, змей, крокодилов и черепах. Среди черепах наиболее распространенными видами являются: среднеазиатская черепаха (Agrionemys horsfieldi), красноухая черепаха (Trachemys scripta elegans), дальневосточный трионикс (Pelodiscus sinensis).

С ростом популяции черепах, содержащихся у любителей животных (по данным Васильева Д.Б. в Москве по очень грубым подсчетам, содержится около 300 000 черепах), возрастает количество болезней и, соответственно, необходимость оказания квалифицированной ветеринарной помощи этой группе животных.

Лечение черепах

До начала лечения животного необходимо провести диагностику. Диагностика болезней черепах является достаточно сложной и трудоемкой процедурой, но от этого зависит правильный выбор лечения.

Среди особенностей этой группы животных хотелось бы подчеркнуть:

• непостоянную температуру тела, зависящую от температуры окружающей среды;
• уникальное строение костной системы (наличие панциря, нахождение плечевого и тазового поясов конечностей внутри панциря);
• отсутствие грудной клетки (дыхание происходит не за счет отрицательного давления в грудной клетке, а за счет сокращения мышц, идущих от плечевого и тазового пояса к пластону, мускулатуры легких, движений головы и передних лап);
• особенности строения сердечно-сосудистой системы (наличие трехкамерного сердца, особенности и топографии ветвления сосудов, наличие воротной системы почек) и т.д.

Помимо внешнего осмотра и физикального исследования, особая роль в диагностике болезней черепах в условиях клиники отводится лабораторной и инструментальной диагностике.

Лабораторная диагностика заболеваний черепах

В условиях клинической лаборатории можно проводить минимум лабораторных исследований:

• исследование мочи,
• кала,
• клинический и биохимический анализы крови.

Анализы мочи и кала у черепах

Моча может быть получена

• путем сдавливания мочевого пузыря (большой и указательный палец вводятся в ямки между карапаксом и пластоном в основании бедер),
• путем введения катетера в мочевой пузырь,
• путем цистоцентеза (в крайних случаях).

Многие черепахи опорожняют мочевой пузырь рефлекторно при осмотре и болезненных манипуляциях, поэтому при осмотре нужно подставлять чистый лоток для того, чтобы собрать мочу.

При исследовании мочи должны определятся такие показатели, как

• плотность,
• кислотность,
• белок,
• глюкоза,
• кровь,
• наличие и окраска мочевого осадка.

Необходимо производить микроскопию нативного и окрашенного мазка.

При помощи анализа мочи больной черепахи могут быть предположительно установлены нарушения со стороны почек и печени, статус дегидратации, мкб, новообразования клоаки и мочевого пузыря, наличие жгутиковых паразитов и т.д. Наличие в моче живых сперматозоидов — один из способов определения пола у рептилий.

При исследовании кала необходимо обращать внимание на

• цвет,
• консистенцию,
• запах,
• наличие инородных тел.

При исследовании фекальных масс также необходимо проводить микроскопию нативного и окрашенного мазков, исследование материала, обогащенного флотационными методами.

С помощью анализа кала можно предположительно определить дисбактериоз, некоторые бактериальные заболевания, печеночную недостаточность, диагностировать протозоозы и гельминтозы.

Биохимический и клинический анализы крови

Общий объем крови у рептилий составляет приблизительно 5-8 % от массы тела. У черепах он относительно ниже, так как в общей массе тела высока доля костной ткани. Без вреда для животного кровь может быть взята в объеме 1% от массы тела. Взятие крови у черепах для биохимического и клинического исследования лучше всего производить из правой яремной вены (левая редуцирована) (рис.1).

При отсечении когтя, кончика хвоста или пункции венозных синусов происходит загрязнение пробы лимфой, тканевой жидкостью, что в свою очередь приводит к ложному повышению некоторых показателей. В качестве антикоагулянта лучше всего использовать литиевый гепарин, потому что другие антикоагулянты вызывают гемолиз и изменяют такой показатель, как общий кальций крови.

Сразу после взятия часть крови нужно использовать для приготовления тонкого мазка, остальную кровь нужно как можно быстрее отцентрифугировать. Так как нормы, которые публикуют разные авторы, могут значительно отличаться друг от друга, лаборатория должна иметь в своем распоряжении результаты исследований, полученные от клинически здоровых животных данного вида, чтобы охарактеризовать свои «нормы», при этом нужно использовать одинаковые методики, кроме того, нормальные показатели могут варьировать в зависимости от возраста, пола, времени года, условий содержания, кормления и т. д.

По нашему мнению, в биохимический анализ должны входить такие показатели, как

• кальций,
• фосфор,
• натрий,
• калий,
• мочевая кислота,
• креатинин,
• мочевина,
• общий белок,
• аланинаминотрансфераза,
• асапаратаминотрансфераза,
• щелочная фосфатаза.

Биохимический профиль у черепах интерпретируется также, как и у других животных.

В клиническом анализе крови черепах должны определятся такие показатели, как

• гемоглобин,
• общее количество эритроцитов и лейкоцитов,
• гематокрит,
• подсчет лейкоцитарной формулы (гетерофилы, эозинофилы, базофилы, лимфоциты, моноциты).

Выполнение и интерпретация клинического анализа крови является достаточно сложным занятием, требующим специальных методик, опыта выполнения.

Инструментальные методы диагностики болезней черепах

Рентгенография

Рентгенография черепах, по нашему мнению, является наиболее доступным методом исследования в диагностике внутренних незаразных болезней.

С помощью рентгенографии в условиях ветеринарной клиники можно установить:

• переломы конечностей и панциря,
• подагру,
• метастатическую минерализацию,
• фиброзную остеодистрофию,
• пневмонию,
• кишечную непроходимость,
• постовулятивную дистоцию,
• уролитиаз,
• артрит.

Для фиксации животных применяют клейкую ленту, скотч, лейкопластырь.

Для черепах обычно используют три рентгенографические проекции:

• Кранио-каудальная проекция используется для определения границ легочного поля, наличия очагов затенения при пневмонии. (Рис.2)
• Дорсо-вентральная проекция используется для исследования скелета, внутренних органов, исследования пищеварительного тракта при контрастной рентгенографии, определения наличия и положения яиц в целоме. (Рис.3)
• Боковая проекция используется для исследования внутренних органов, уточнения местоположения очагов затенения при пневмонии. (Рис.4)

По данным Васильева Д.Б., для большинства черепах среднего размера практически идеальны параметры съемки- 50 Kv, 15 mA, 400 MA, с фокусным расстоянием 70 см. Мы придерживались таких рекомендаций.

При помощи контрастной рентгенографии желудочного тракта с суспензией сульфата бария или ионорганическими контрастными средствами (Омнипак) устанавливается кишечная непроходимость. (Рис.5)

Эндоскопия

Эндоскопическое исследование черепах применяется с целью диагностической визуализации внутренних органов, взятия биопсийного материала, удаления инородных тел, определения пола, эндоскопической хирургии.

Широкое использование эндоскопии черепах ограничено в основном высокой стоимостью оборудования.

Ультразвуковое исследование

Из-за наличия панциря этот вид исследования наиболее затруднен для черепах. УЗИ можно проводить только достаточно крупным черепахам, позволяющим расположить ультразвуковой датчик в так называемых «ультразвуковых окнах». Таких окон 6 в основании шеи, в подмышечных областях, в паховых ямках. Через такие окна можно исследовать состояние сердца, печень, почки, мочевой пузырь, нисходящую ободочную кишку, яйцеводы у беременных самок.